考马斯亮蓝R-250与G-250的区别
考马斯亮蓝R-250 与 G-250区别
【摘要】R250:一般用于染蛋白胶,染色后为红蓝色。G250:一般用于测蛋白浓度,也可染胶,染色后为蓝绿色,且特异性更高,但脱色较慢较难。
在蛋白质染色中,目前考马斯亮蓝染色法最为常用,1965年考马斯亮蓝应用于聚丙烯酰胺凝胶染色,它步骤简便、灵敏度较高,可进行定量扫描。它可分为考马斯亮蓝R-250和考马斯亮蓝G-250两类:
考马斯亮蓝R-250(Coomassie brilliant blue R250)C45H44O7H3S2Na,MW=824,λmax=560―590nm。染色灵敏度比氨基黑高5倍。尤其适用于SDS电泳微量蛋白质染色。但蛋白质浓度超出一定范围时,对高浓度蛋白的染色不符合Beer定律,用作定量分析时要注意这点。
考马斯亮蓝G-250(Coomassie brilliant blue G-250)又名Xylene brilliant cyanin G。比考马斯亮蓝R250多二个甲基。MW=854;λmax=590―610nm。染色灵敏度不如R250,但比氨基黑高3倍。优点在于它在三氯乙酸中不溶而成胶体,能选择地染色蛋白而几乎无本底色。所以常用于需要重复性好和稳定的染色,适于作定量分析。
考马斯亮蓝G-250在游离状态下呈红色,最大光吸收在488nm;当它与蛋白质结合后变为青色,蛋白质-色素结合物在595nm波长下有最大光吸收。其光吸收值与蛋白质含量成正比,因此可用于蛋白质的定量测定。蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在2min左右的时间内达到平衡,完成反应十分迅速;其结合物在室温下1h内保持稳定。该法是1976年Bradford建立,试剂配制简单,操作简便快捷,反应非常灵敏,灵敏度比Lowry法还高4倍,可测定微克级蛋白质含量,测定蛋白质浓度范围为0~1000μg/mL,是一种常用的微量蛋白质快速测定方法。
两者比较:
1.结构:考马斯亮蓝R-250为三苯基甲烷(triphenylmethane),每个分子含有两个SO3H基团,本身偏酸性,磺酸基与蛋白质的碱性基团结合形成染料—蛋白质复合物;R250中的R代表Red,偏红。
考马斯亮蓝G-250为二甲花青亮蓝(xylene cyanine brilliant blue),是一种甲基取代的三苯基甲烷。G250中的G就是Green,偏绿。
2 灵敏度:考马斯亮蓝R-250灵敏度比氨基黑高5倍;考马斯亮蓝G-250染色灵敏度不如R250,但比氨基黑高3倍。
3.染色速度:R250属于慢染,脱色脱的完全;G250属于快染,脱色脱的不彻底。G250染色迅速,着色深的蛋白质区带在数秒内即可显现出来,约45分钟后着色最深,
4 用途:
(1)考马斯亮蓝R-250是通过范德瓦尔键与蛋白质结合,考马斯亮蓝R250尤其适用于SDS-PAGE电泳微量蛋白质的染色。
(2)考马斯亮蓝R-250与不同蛋白质结合呈现出基本相同的颜色,并且在比较宽的范围内(15—20ug),扫描峰的面积与蛋白量呈线性关系,常用于定量试验用
注意:蛋白质浓度超出一定范围时,对高浓度蛋白的染色不符合Beer定律,用作定量分析时要注意这点。
(3)经SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分离的蛋白质样品可用考马斯亮蓝R250染色。染色1~2小时或过夜,然后用脱色液脱色;染色液(0.1%考马斯亮蓝 R250,40% 甲醇10% 冰醋酸
(4)考马斯亮蓝G-250优点在于它在三氯乙酸中不溶而成胶体,能选择地染色蛋白而几乎无本底色。所以常用于需要重复性好和稳定的染色,适于作定量分析。在进行小分子量蛋白的Tricine电泳是常用G250染色,
(5)R250一般染蛋白,G250一般测蛋白浓度,也可染胶,但脱色较慢较难。
(6)G250常作为定性试验用,染色后为蓝绿色;R250较敏感,常作为定量实验用,染胶效果较好,染色后为红蓝色。
附录:考马斯亮蓝R-250染色液配方
1、考马斯亮蓝R-250染色液配方
R-250 1.25g
冰醋酸 (MW:60.05) 50ml
甲醇 225ml
去离子水 225ml
溶解后用滤纸过滤
2、脱色液配方:
冰醋酸 100ml
甲醇 300ml
去离子水 680ml
备注:
1、电泳完毕后用蒸馏水漂洗凝胶两次,每次2分钟,此步目的是洗去残留SDS,可降低染色背景。
2、染色的时间至少要0.5-1小时,染色过夜可增加微量蛋白的染色,提高灵敏度。回收染色液用十几次没问题。
3、快速法:加入染色液100ml,加盖微波加热(短暂煮沸),振摇染色5-10 min,回收染色液,自来水漂洗一次,加脱色液50-100ml,脱色10-20min,观察。整个过程不超过40min,过夜染色非必须。
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